Fructan Assay Kit

fructan

Fejezet kiválasztásához játssza le a videót, és válassza ki a kívánt fejezetet a videokijelző opciói közül.

1. fejezet: Bevezetés: Az analitikai eljárás elmélete
2. fejezet: A készlet tartalma
3. fejezet: A reagenskészletek előkészítése
4. fejezet: Pufferoldatok készítése
5. fejezet: A PAHBAH reagens előállítása
6. fejezet: Alkáli-bór-hidrid-oldat elkészítése
7. fejezet: Minták mérése
8. fejezet: Vizsgálati eljárás: Kivonás és szűrés
9. fejezet: Vizsgálati eljárás: Szacharóz, keményítő és redukáló cukor eltávolítása
10. fejezet: Vizsgálati eljárás: Hidrolízis és a fruktán mérése
11. fejezet: Vizsgálati eljárás: Szín kifejlesztése PAHBAH reagenssel
12. fejezet: Számítások

100 teszt készletenként

Az árak nem tartalmazzák az áfát

Szállításra kapható

  • Adatfüzet
  • SDS
  • Mega-Calc
  • COA-k
  • GYIK
  • Előadások
Tartalom: 100 teszt készletenként
Szállítási hőmérséklet: Környező
Tárolási hőmérséklet: Rövid távú stabilitás: 2-8 o C,
Hosszú távú stabilitás: Lásd az egyes alkatrészek címkéit
Stabilitás: > 2 év ajánlott tárolási körülmények között
Analit: Fructan
Tesztformátum: Spektrofotométer
Detektálási módszer: Abszorbancia
Hullámhossz (nm): 410
Jel válasz: Növekedés
Lineáris tartomány: 2,3-55 ug D-fruktóz vagy D-glükóz vizsgálatonként
Kimutatási határ: 0,16 g/100 g
Teljes vizsgálati idő:

A Fructan Assay Kit alkalmas a fruktán specifikus mérésére növényi kivonatokban, állati takarmányokban és keményítőt, szacharózt és más cukrokat tartalmazó élelmiszertermékekben. A fruktán meghatározására három validált módszerben alkalmazzák: AOAC 999.03 módszer (élelmiszerek), AOAC 2018.07 módszer (állati takarmány) és AOAC 2016.14 módszer (anyatej-helyettesítő tápszerek és felnőtt táplálkozási anyagok).

Új, továbbfejlesztett eljárás.

A legújabb fejlesztés során egy rekombináns endo-levanázt építettek be a fruktanáz keverékbe, kiterjesztve a módszer alkalmazását a leván típusú fruktánok mérésére, amelyek olyan füvekben vannak jelen, mint a timothy, a kakasláb, a gyepes és a vörös csemege.

Az ebben a füzetben leírt módszer ultratiszta, rekombináns enzimeket alkalmaz, és kifejezetten méri a fruktánokat, beleértve az inulin típusú fruktánokat a cikóriából, a dáliából, a jerusalem articsókából; erősen elágazó fruktánok hagyma- és búzaszárból és levelekből; és leván típusú fruktánok legelőfűvekből, mint például a timothy fű. Az alkalmazott enzimek teljesen nélkülözik a β-glükánon vagy glükóz-oligoszacharidokon aktív szennyező enzimeket.

  • Nagyon költséghatékony
  • Minden reagenskészlet az elkészítést követően> 2 évig stabil
  • Nem befolyásolja a magas szacharóz/redukáló cukor koncentráció
  • A Fructan készletek csak a Megazyme-tól kaphatók
  • Egyszerű formátum
  • A Mega-Calc ™ szoftvereszköz elérhető a weboldalunkról a nyers adatfeldolgozás problémamentessége érdekében
  • Standard tartalmazza

A fruktán (inulin, FOS, Levan és elágazó fruktán) meghatározása az állati táplálékban (állati takarmány, állateledel és összetevők): Egy laboratóriumi validálás, első fellépés 2018.07.

McCleary, B. V., Charmier, L. M. J., McKie, V. A., Ciara McLoughlin, C. & Rogowski, A. (2019). Journal of AOAC International, 102 (3), 2019 883.

McCleary, B. V., Charnock, S. J., Rossiter, P. C., O’Shea, M. F., Power, A. M. & Lloyd, R. M. (2006). Journal of the Science of Food and Agriculture, 86 (11), 1648-1661.

A keményítő, a keményítő károsodásának (zselatinizált keményítő), a rezisztens keményítő és a keményítő, a β-glükán, a fruktán, a glükomannán és a galaktozil-szacharóz oligoszacharidok (raffinóz, sztachioz és verbaszkóz) növényi anyagban, állati takarmányokban történő mérésére szolgáló eljárások és az ételeket leírják. E módszerek többségét sikeresen vizsgálták laboratóriumok közötti értékeléssel. Valamennyi módszer a hagyományos kromatográfiával tisztított vagy molekuláris biológiai technikákkal előállított enzimek felhasználásán alapul. Az ilyen módszerek lehetővé teszik egy adott komponens specifikus, pontos és megbízható számszerűsítését. A vizsgálati mintákban szereplő galaktozil-szacharóz-oligoszacharidok tényleges tömegének kiszámításával kapcsolatos problémákat részletesen tárgyaljuk.

McCleary, B. V., Murphy, A. és Mugford, D. C. (2000). Journal of AOAC International, 83 (2), 356-364.

AOAC együttműködésen alapuló vizsgálatot végeztek az oligofruktánok és a fruktán-poliszacharid (inulinok) vegyes anyagokban és élelmiszer-ipari termékekben történő mérésére szolgáló enzimvizsgálati készlet-pontosság és megbízhatóság értékelésére. A mintát forró vízzel extraháljuk, és egy alikvot részt szacharáz (egy specifikus szacharózt lebontó enzim), α-amiláz, pullulanase és maltáz keverékével kezelünk, hogy a szacharózt glükózzá és fruktózzá, valamint keményítőt glükózzá hidrolizáljuk. Ezeket a redukáló cukrokat ezután lúgos bór-hidrid oldattal kezeljük cukoralkoholokká. Az oldatot semlegesítjük, és a bórhidrid feleslegét híg ecetsavval eltávolítjuk. A fruktánt tisztított exo- és endo-inulinanázok (fruktanáz-keverék) keverékével fruktózzá és glükózzá hidrolizáljuk. A keletkező redukáló cukrokat (fruktózt és glükózt) para-hidroxi-benzoesav-hidraziddal végzett reakció után spektrofotométerrel mérjük. Az elemzett minták tiszta fruktánt, csokoládét, alacsony zsírtartalmú kenést, tejport, vitamintablettákat, hagymaport, csicsóka lisztet, búzaszárat és szacharóz/cellulóz kontrolllisztet tartalmaztak. Az ismételhetőség relatív szórása 2,3 és 7,3% között mozgott; reprodukálhatóság relatív szórása 5,0 és 10,8% között mozgott.

McCleary, B. V., Gibson, T. S. és Mugford, D. C. (1997). Journal of AOAC International, 80, 571-579.

R. S. & Singh, R. P. Singh. (2017). „A biotechnológia és a biomérnöki munka jelenlegi fejleményei”, 423–446.

Duar, R. M., Ang, P. T., Hoffman, M., Wehling, R., Hutkins, R. & Schlegel, V. (2015). Cogent Food & Agriculture, 1 (1), 1013782.

Prebiotikus szénhidrátokat adnak funkcionális összetevőként a különféle feldolgozott élelmiszerekhez. A prebiotikumok stabilitására vonatkozó adatok az összetett mátrixokban történő élelmiszer-feldolgozás során továbbra is korlátozottak. A projekt célja a fruktooligoszacharidok (FOS), az inulin, a galaktooligoszacharidok (GOS) és a rezisztens keményítő (RS2) stabilitásának meghatározása, ha összetevőként (1 tömegszázalék) hozzáadják egy extrudált gabonaféléhez és alacsony pH-értékű italhoz. . A gabonát különféle csavarási sebességgel és hordóhőmérsékleten készítették el. A GOS-t egyik extrudálási körülmény sem befolyásolta, míg az inulin jelentősen csökkent 140 és 170 ° C-on. Az FOS-szintek minden extrudálási körülmények között csökkentek, míg a rezisztens keményítő (RS) váratlanul megnőtt az egyes paramétereknél. Az alacsony pH-értékű italt különböző szacharóz: kukorica szirup szilárd anyag (S: CSS) arányokkal (1: 2, 1: 1, 2: 1) készítettük pH-n 3,0, 3,5 és 4,0 mellett. Az 1: 1 S: CSS ital pH-ján 3,0 negatívan befolyásolta az FOS-t és az inulint. Sőt, az FOS-szintek csökkentek 1: 2 S: CSS (pH 3,5 és 4,0) és 1: 1 S: CSS (pH 3,0) hatásának hatására. A GOS-t és az RS-t semmilyen italkészítmény nem befolyásolta. Mivel a különböző körülmények eltérő módon befolyásolják a prebiotikumok stabilitását, ez a tanulmány foglalkozik az egyes prebiotikumokra vonatkozó termékspecifikus folyamatok kidolgozásának fontosságával, ha feldolgozott élelmiszerekké egészítik ki őket.

da Silva Almeida, A. P., Avi, C. M., Barbisan, L. F., de Moura, N. A., Caetano, B. F. R., Romualdo, G. R. & Sivieri, K. (2015). Food Research International, 74, 48-54.

Mudannayake, D. C., Wimalasiri, K. M. S., Silva, K. F. S. T. & Ajlouni, S. (2015). Srí Lanka-i Nemzeti Tudományos Alapítvány folyóirata, 43 (1).

Resconi, V. C., Keenan, D. F., Gough, S., Doran, L., Allen, P., Kerry, J. P. & Hamill, R. M. (2015).

A rizskeményítőt (RS) és a frukto-oligoszacharidokat (FOS) főtt sonkákban foszfátok (STPP) és dextróz (Dex) helyettesítőjeként vizsgálták válaszfelületi módszertan (RSM) segítségével. Az RS, az STPP, a Dex és a FOS-t 25 menetben egyesítettük, és a Biceps femoris (BF) és a Semimembranosus (SM) izmokra helyeztük. Az izmokat befecskendezték (a zöld tömeg 120% -a), megdöntötték, hálózták és gőzben főzték. A főzési veszteséget és a hozamot az STPP befolyásolta. A színt főleg az izom típusa, de a vizsgált összetevők is befolyásolták; mivel a textúrát elsősorban az STPP és az RS befolyásolta. Az NMR és az expresszálható nedvesség adatok azt mutatták, hogy az RS-t tartalmazó mintákban nagyobb a szabad víz visszatartása. Ezt fénymikroszkóppal vizualizálták keményítőgél zsebekként. A termés némi csökkenése ellenére megvalósítható az STPP helyettesítése RS-vel és kielégítő minőségű termék előállítása. Az egészségügyi állítás igazolásához azonban magasabb szintű FOS-ra lenne szükség.

Giuntini, E. B., Dan, M. C., Lui, M. C. Y., Lajolo, F. M. & Menezes, E. W. (2015). Food Research International, 76 (3), 395-401.

A nem hozzáférhető szénhidrátok - funkcionális összetevők - fordított összefüggést mutatnak a krónikus, nem fertőző betegségek kockázatával. Ennek a munkának az volt a célja, hogy értékelje az inulin két kész fagyasztott ételhez történő hozzáadásának hatását a gyomor-bélrendszeri hormonok felszabadulására, valamint az éhséggel és jóllakottsággal kapcsolatos egyéb paraméterekre. Az élelmiszeripar két különböző fagyasztott étel prototípusát dolgozta ki: kontroll liszt (C1 és C2); és tesztétkezések, inulin hozzáadása (T1 és T2). Három egymást követő klinikai vizsgálatot végeztek egészséges önkéntesekkel: 1) a glikémiás válasz értékelése (n = 16); 2) a jóllakottsággal kapcsolatos emésztőrendszeri hormonok értékelése (n = 15); és 3) a jóllakottság értékelése (vizuális analóg skála alapján - VAS és energia bevitel) (n = 52). Az étkezések alacsony glikémiás indexet és glikémiás terhelést mutattak, a T1 pedig csökkent glikémiás válasz csúcsot mutatott a C1-hez képest. Az inulin hozzáadása (

8 g) a tesztétkezésekhez (ebéd) jelentős jóllakottságot biztosítottak, ami a következő két étkezés során (180 perc és 360 perc után) 419 (1. csoport) és 586 kJ (2. csoport) energiafogyasztás csökkenését eredményezte. éhségben és a jóllakottság növekedésében 120 és 180 percnél, összehasonlítva a kontroll étkezéssel. Pozitív étkezés utáni eltérést figyeltek meg a ghrelin és az inzulin plazmatikus szintjében a kontroll étkezéshez viszonyítva (az éhezéssel kapcsolatos hormonok magas szintje), mindkét tesztétel bevétele után. Az inulin olyan összetevő, amely számos pozitív tulajdonsággal rendelkezik az egészséges táplálkozási szokásokat serkentő termékek kidolgozásában. Ezeket a hatásokat jelenleg középtávú vizsgálatokban értékelik.

Borrill, P., Fahy, B., Smith, A. M. és Uauy, C. (2015). PloS One, 10 (8), e0134947.

Felvetődött, hogy a késleltetett levélöregedés meghosszabbíthatja a gabona kitöltési időtartamát, és ezáltal növelheti a gabonanövények termését. Megállapítottuk, hogy a késleltetett öregedéssel rendelkező búza (Triticum aestivum) NAM RNAi növények 40% -kal több zászlólevél fotoszintézist hajtottak végre az antitézis után, mint a kontroll növények, de a keményítő felhalmozódásának üteme és időtartama ugyanolyan volt és a szemcsék végtömege azonos volt. A NAM RNAi növényekben rendelkezésre álló további fotoszintátumot részben fruktánként tároltuk a szárakban, míg a szárfruktánokat a gabona feltöltése során a kontroll növényekben újra mobilizáltuk. Mindkét genotípusban a keményítőszintáz aktivitása korlátozta a keményítőszintézist a szemcsés feltöltés későbbi szakaszaiban. Javasoljuk, hogy a késleltetett levélöregedés potenciális hozamnövekedésének megvalósítása érdekében ezt a tulajdonságot kombinálni kell a megnövekedett gabonatöltő képességgel.

Németh, C., Andersson, A. A. M., Andersson, R., Mangelsen, E., Sun, C. és Åman, P. (2014). Food and Nutrition Sciences, 5, 581-589.

A fruktánok fontosak a növények túlélésében, és értékesek az emberek számára, mivel potenciálisan egészséget elősegítő élelmiszer-összetevők. Ebben a tanulmányban a fruktántartalmat és az összetételt 20 árpa tenyésztési vonal és fajták szemcséiben határozták meg, kémiai összetételük, morfológiájuk és származási országuk nagy eltérésekkel, Chilében egy helyen termesztették. Jelentős genotípusos eltérés volt megfigyelhető a gabona szárazanyag tömegének 0,9–4,2% -a között. A fruktán polimerizációs fokot (DP) nagy teljesítményű anioncserélő kromatográfiával analizáltuk pulzáló amperometrikus detektálással (HPAEC-PAD). A különböző lánchosszak eloszlásának és a fruktán szerkezeti mintázatának változását a különböző árpákban növekvő mennyiségű fruktánnal detektáltuk. Pozitív összefüggést találtunk a fruktántartalom és a hosszú láncú fruktán relatív mennyisége (DP> 9) között (r = 0,54, p = 0,021). Eredményeink alapot nyújtanak az ígéretes árpavonalak és fajták kiválasztásához a fruktán további kutatásához az árpa tenyésztésében azzal a céllal, hogy egészséges élelmiszertermékeket állítsanak elő.

Andersson, AAM, Andersson, R., Piironen, V., Lampi, AM, Nyström, L., Boros, D., Fraś, A., Gebruers, K., Courtin, CM, Delcour, JA, Rakszegi, M., Bedo, Z., Ward, JL, Shewry, PR & man, P. (2013). Food Chemistry, 136 (3-4), 1243-1248.

A teljes kiőrlésű búzaminták nagy és változatos anyaggyűjteményét (n = 129) elemezték az összes étrendi rost (TDF) tartalom és összetétel tekintetében, beleértve a fruktánt (11,5–15,5%). Az étkezési rostkomponensek, a hozzájuk kapcsolódó bioaktív komponensek (pl. Tokolok, szterolok, fenolsavak és folátok) és az ugyanazon mintákon korábban meghatározott agronómiai tulajdonságok közötti összefüggéseket többváltozós elemzéssel (PCA) találtuk. Az azonos országokból származó minták hasonló tulajdonságokkal bírtak. Az első PC a keményítőtartalmú endospermában koncentrált komponensek (például keményítő, p-glükán és fruktán) és a korpába koncentrált étkezési rost-komponensek (például TDF, arabinoxilán és cellulóz) variációját írta le. A második PC leírta a mag tömegének és más korpakomponensek, például az alkil-rezorcinok, tokolok és szterinek variációját. Érdekes módon nem volt összefüggés a korpakomponensek különböző csoportjai között, ami tükrözte a koncentrációjukat a korpaszövetekben. Az eredmények fontosak azoknak a növénynemesítőknek, akik egészségfejlesztő hatású fajtákat kívánnak kifejleszteni.

Thakur, M., Connellan, P., Deseo, M. A., Morris, C., Praznik, W., Loeppert, R. & Dixit, V. K. (2012). International Journal of Biological Macromolecules, 50 (1), 77-81.

Paßlack, N., Al-Samman, M., Vahjen, W., Männer, K. & Zentek, J. (2012). Állattenyésztés, 149 (1-2), 128-136.

Longland, A. C., Dhanoa, M. S. és Harris, P. A. (2012). Journal of the Science of Food and Agriculture, 92 (9), 1878-1885.

Yasui, T. és Ashida, K. (2011). Gabonatudományi folyóirat, 53 (1), 104-111.

Rakha, A., Åman, P. & Andersson, R. (2011). Nemzetközi molekuláris tudományi folyóirat, 12 (5), 3381-3393.

Kamal-Eldin, A., Lærke, H. N., Knudsen, K. E. B., Lampi, A. M., Piironen, V., Adlercreutz, H., Katina, K., Poutanen, K. & Aman, P. (2009). Élelmiszer- és táplálkozási kutatás, 53.

Haskå, L., Nyman, M. & Andersson, R. (2008). Journal of Cereal Science, 48 (3), 768-774.